Poder germinativo da Polylepis incana com aplicação de diferentes tratamentos de água

##plugins.themes.bootstrap3.article.main##

Ángel Canales Gutiérrez
Yanina Ruth Huarasa Vilca

Resumo

Polylepis incana Kunth (queñoa), é uma espécie que tem várias utilizações locais, no entanto, apresenta um baixo poder germinativo em condições naturais. O objetivo da investigação era comparar o poder germinativo da Polylepis incana, com tratamentos de coco, resíduos e água de poços. Foi realizada uma experiência com três tipos de água e cinco doses de água (5, 10, 15, 20 e 25 ml). A germinação foi desenvolvida em 15 tabuleiros, em cada um deles foram adicionados 750 g de substrato e 20 sementes. A irrigação foi feita diariamente com diferentes quantidades de água, de 5 a 25 ml. A percentagem do poder germinativo, temperatura e pH do solo foram registados diariamente. As análises estatísticas foram levadas a cabo no programa INFOSTAT. O maior poder germinativo das sementes foi registado com irrigação com água residual (9 %), enquanto as sementes irrigadas com coco e água de poço atingiram 4 %. Portanto, 9 % do poder germinativo foi obtido a partir de sementes de P. incana irrigadas com águas residuais.

Downloads

Não há dados estatísticos.

##plugins.themes.bootstrap3.article.details##

Como Citar
Canales Gutiérrez, Ángel, & Huarasa Vilca, Y. R. (2020). Poder germinativo da Polylepis incana com aplicação de diferentes tratamentos de água. Jornal Cubano De Ciências Florestais, 8(3), 495–506. Obtido de https://cfores.upr.edu.cu/index.php/cfores/article/view/656
Secção
Artículos científicos
Biografia Autor

Ángel Canales Gutiérrez, Institución de adscripción: Programa de Ecología de la Facultad de Ciencias Biológicas de la Universidad Nacional del Altiplano de Puno

Docente principal de la Facultad de Ciencias Biológicas. Investigador reconocido por CONCYTEC PERU

Referências

ABDELLAOUI, R., BOUGHALLEB, F., ZAYOUD, D., NEFFATI, M. y BAKHSHANDEH, E., 2019. Quantification of Retama raetam seed germination response to temperature and water potential using hydrothermal time concept. Environmental and Experimental Botany [en línea], vol. 157, pp. 211216. Disponible en doi: https://doi.org/10.1016/j.envexpbot.2018.10.014

ARANA-PAREDES, M., RENGIFO, S. y CHICO-RUIZ, J., 2015. Germinación in vitro de Dianthus caryophyllus en diferentes medios de cultivo. Sagasteguiana [en línea], vol. 3, no. 1, pp. 5566. Disponible en: http://revistas.unitru.edu.pe/index.php/REVSAGAS/article/view/2009/1922

ARGIBAY, D. y RENISON, D., 2018. Efecto del fuego y la ganadería en bosques de Polylepis australis (Rosaceae) a lo largo de un gradiente altitudinal en las montañas del centro de la Argentina. Bosque [en línea], vol. 39, no. 1, pp. 145-150. Disponible en doi: https://doi.org/10.4067/S0717-92002018000100145

ARGOLLO, J., SOLIZ, C. y VILLALBA, R., 2004. Potencialidad dendrocronológica de Polylepis tarapacana en los Andes Centrales de Bolivia. Ecología en Bolivia [en línea], vol. 39, no. 1, pp. 5-24. Disponible en: http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1605-25282004000700002

BELTRÁN, D., PALOMINO, R., MORENO, E., PERALTA, C., y MONTESINOS, D., 2015. Calidad de agua de la bahía interior de Puno, lago Titicaca durante el verano del 2011. Revista Peruana de Biología [en línea], vol. 22, no. 3, pp. 335-340. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.15381/rpb.v22i3.11440

CAPRILES, J. y FLORES, E., 2002. The economic, symbolic, and social imporatnce of the "keñua" (Polylepis spp.) during prehispanic times in the andean highlands of Bolivia. Ecotropia [en línea], vol. 8, pp. 225-235. Disponible en: http://saberesbolivianos.com/investigadores/Capriles/Capriles%20&%20Flores%202002.pdf

CARDONELL, M., FLÓREZ, M., MARTÍNES E. y PRIETO, A., 2012. Germinación de pratenses regadas con agua residual depurada. Ingeniería de Recursos Naturales y del Ambiente [en línea], vol. 11, pp. 73-82. Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oaid=231125817011

CASTAÑEDA, R. y ALBÁN, J., 2016. Importancia cultural de la flora silvestre del distrito de Pamparomás, Ancash, Perú. Ecología Aplicada [en línea], vol. 15, no. 2, pp. 151-169. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.21704/rea.v15i2.755

CASTRO, A. y FLORES, M., 2015. Caracterización de un bosque de queñual (Polylepis spp.) ubicado en el distrito de Huasta, provincia de Bolognesi (Ancash, Peú). Ecología Aplicada [en línea], vol. 14 no. 1, pp. 1-10. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1726-22162015000100001

DAUD, A., HABIB, N. y RIERA, A., 2007. Actividad diurética de extracto acuoso de Polylepis australis (queñoa) y Phrygilanthus acutifolius (corpo). Estudio comparativo en ratas. Farmacología y Actividad Biológica [en línea], vol. 6, no. 6, pp. 337-339. Disponible en: https://www.redalyc.org/articulo.oa?id=85617472013

DEL POZO J.C., LOPEZ-MATAS, M.A., RAMIREZ-PARRA, E. y GUTIERREZ, C., 2005. Hormonal control of the plant cell cycle. Plant Physiol [en línea], vol. 123, no. 2, pp. 173-183. Dosponible en doi: https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.2004.00420.x

DELGADO, J. y LEÓN-VARGAS, Y., 2017. Musgos (Bryophyta) de bosques de Polylepis sericea (Rosaceae) del estado Mérida (Venezuela). Boletín De La Sociedad Argentina De Botánica [en línea], vol. 52, no. 2,pp. 295313. Disponible en doi: https://doi.org/10.31055/1851.2372.v52.n2.17445

DOMIC, A. y CAPRILES, J., 2009. Allometry and effects of extreme elevation on growth velocity of the Andean tree Polylepis tarapacana Philippi (Rosaceae). Plant Ecology [en línea], vol. 205, no. 2, pp. 223234. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.1007/s11258-009-9612-5

DOMIC, A., MAMANI E. y CAMILO, G., 2013. Fenologia reproductiva de la kewiña (Poylepis tomentella, Rosaceae) en la puna semihúmeda de Chuquisaca (Bolivia). Ecologia en Bolivia [en línea], vol. 48, no. 1, pp. 3145. Disponible en: http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1605-25282013000100004

DOMIC, A., PALABRAL-AGUILERA, A., GÓMEZ, M., HURTADO, R., ORTUÑO N. y LIBERMAN, M., 2017. Polylepis incarum (Rosaceae) una especie en peligro crítico en Bolivia: Propuesta de reclasificación en base al área de ocupación y estructura poblacional. Ecología en Bolivia [en línea], vol. 52, no. 2, pp. 116-131. Disponible en: http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1605-25282017000200006

ENRICO, L., FUNES, G. y CABIDO, M., 2004. Regeneration of Polylepis australis Bitt. in the mountains of central Argentina. Forest Ecology and Management [en línea], vol. 190, no. 23, pp. 301309. Disponible en doi: https://dx.doi.org/10.1016/j.foreco.2003.10.020

GUTIÉRREZ, I. y BECERRA, P., 2018. Composición, diversidad y estructura de la vegetación de bosques ribereños en el centro sur de Chile. Bosque [en línea], vol. 39, no. 2, pp. 239-253. Disponible en doi: http://doi.org/10.4067/S0717-92002018000200239

HIDALGO, F., BUSTAMANTE, V., MUÑOZ, F., SERRA, M., RIOSECO, T. y CARDOZO, C., 2013. Estructura de una población de queñoa (Polylepis tarapacana Phil), Carcanal de Ujina, región de Tarapacá, Chile. Geobiota, 2pp

KESSLER, M. y SCHMIDT-LEBUHN, A., 2006. Taxonomical and distributional notes on Polylepis (Rosaceae). Organisms Diversity and Evolution [en línea], vol. 6, no. 1, pp. 6769. Disponible en doi: https://doi.org/10.1016/j.ode.2005.04.001

LANDI, M. y RENISON, D., 2010. Forestación con Polylepis australis en suelos erosionados de las Sierras Grandes de Córdoba: evaluación del uso terrazas y vegetación nodriza. Ecología Austral [en línea], vol. 20, pp. 47-55. Disponoble en: https://ri.conicet.gov.ar/handle/11336/53237?show=full

MENDOZA, W. y CANO, A., 2011. Diversidad del género Polylepis (Rosaceae, Sanguisorbeae) en los andes peruanos. Revista Peruana de Biologia [en línea], vol. 18, no. 2, pp. 197-200. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?pid=S1727-99332011000200011&script=sci_abstract

MONTESINOS-TUBÉE, D., PINTO, A., BELTRÁN, D. y GALIANO, W., 2015. Vegetación de un bosque de Polylepis incarum (Rosaceae) en el distrito de Lampa, Puno, Perú. Revista Peruana de Biologia [en línea], 22(1): 8796. Disponible en doi: https://doi.org/10.15381/rpb.v22i1.11125

OLIVEIRA, M., CARVALHO, D., GOMES, D., PEREIRA, F. y MEDICI, L., 2018. Production of cut sunflower under water volumes and substrates with coconut fiber Produção de girassol de corte sob volumes de água e substratos com fibra de coco. Revista Brasileira de Engenharia Agrícola e Ambiental [en línea], vol. 22, no. 12, pp. 859865. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.1590/1807-1929/agriambi.v22n12p859-865.

PASSARINI, K., GAMARRA, F., VANALLE, R. y SANTANA, J., 2012. Reutilización de las aguas residuales en la irrigación de plantas y en la recuperación de los suelos. Información Tecnológica [en línea], vol. 23, no. 1, pp. 57-64. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.4067/S0718-07642012000100007

PATIÑO, C., MOSQUERA, F. y TULIO, G. 2011. Efecto inductor del agua de coco sobre la germinación de semillas y brotamiento de los cormos de la hierba de la equis (Dracontium ryumianum). Acta Biológica Colombiana [en línea], vol. 16, no. 1, pp. 133-142. Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=319027887010

PULIDO, K. y RAMOS, C., 2016. Efecto de borde en la distribución de líquenes y el contenido de clorofilas en fragmentos de Polylepis quadrijuga (Rosaceae) en el páramo de La Rusia (Boyacá-Colombia). Revista de Biología Tropical [en línea], vol. 64, no. 4, pp. 1683-1697. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.15517/rbt.v64i4.22735

QUINTO, L., MARTÍNEZ-HERNÁNDEZ, P.A., PIMENTEL-BRIBIESCA, L. y RODRÍGUEZ-TREJO, D.A., 2009. Alternativas para mejorar la germinación de semillas de tres árboles tropicales. Revista Chapingo. Serie ciencias forestales y del medio ambiente [en línea], vol. 15, no. 1, pp. 23-28. Disponible en: http://www.scielo.org.mx/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S2007 -40182009000100003

RENISON, D. y CINGOLANI, A., 1998. Experiencias en germinación y reproducción vegetativa aplicados a la reforestación con Polylepis australis (Rosaceae) en las Sierras de Córdoba, Argentina. Agriscientia [en línea], vol. 15, pp. 47-53. Disponible en: https://revistas.unc.edu.ar/index.php/agris/article/view/2607

RENISON, D., HENSEN, I. y CINGOLANI, A., 2004. Anthropogenic soil degradation affects seed viability in Polylepis australis mountain forests of central Argentina. Forest Ecology and Management [en línea], vol. 196 no. 2-3, pp. 327-333. Disponible en doi: https://doi.org/10.1016/j.foreco.2004.03.025

ROSERO, S., ARCOS, J., GUALLPA, M. y GUARACA, F., 2018. Efecto de la aplicación de solución nutritiva para el crecimiento inicial de Polylepis racemosa a nivel de vivero. Enfoque UTE [en línea], vol. 9, no. 2, pp. 198-207. Disponible en: 10.29019/enfoqueute.v9n2.207 (consultado junio de 2019)

SANTOS, J., BISPO, V., FILHO, A., PINTO, I., DANTAS, L., VASCONCELOS, D., ABREU, F., MELO, D., MATOS, I., FREITAS, F., GOMES, O., MEDEIROS, M. y MATOS, H., 2013. Evaluation of chemical constituents and antioxidant activity of coconut water (Cocus nucifera L.) and caffeic acid in cell culture. Anais da Academia Brasileira de Ciencias [en línea], vol. 85, no. 4, pp. 1235-1246. Disponible en doi: http://dx.doi.org/10.1590/0001-37652013105312

SCHMIDT-LEBUHN, A., KUMAR M. y KESSLER, M., 2006. An assessment of the genetic population structure of two species of Polylepis Ruiz y Pav. (Rosaceae) in the Chilean Andes. Flora [en línea], vol. 201, no. 4, pp. 317-325. Disponible en doi: https://dx.doi.org/10.1016/j.flora.2005.07.007

SELTMANN, P., RENISON, D., COCUCCI, A., HENSEN, I. y JUNG, K., 2007. Fragment size, pollination efficiency and reproductive success in natural populations of wind-pollinated Polylepis australis (Rosaceae) trees. Flora [en línea], vol. 202, no.7, pp. 547-554. Disponible en doi: https://doi.org/10.1016/j.flora.2006.12.002

SIMOES, N. y RENISON, D., 2015. ¿Cuántos años monitorear el éxito de plantaciones con fines de restauración?: Análisis en relación al micrositio y procedencia de las semillas. Bosque [en línea], vol. 36, no. 2, pp. 315-322. Disponible en doi: https://doi.org/10.4067/S0717-92002015000200016

TORRES, R., RENISON D., HENSEN I., SUAREZ R. y ENRICO L. 2008. Polylepis australis' regeneration niche in relation to seed dispersal, site characteristics and livestock density. ScienceDirect, vol. 254, pp. 255-260. Disponible en doi:10.1016/j.foreco.2007.08.007

VASCO, S., 2010. Tratamiento para promover la germinación de semillas de Polylepis reticulata Hieron y Polylepis lanuginosa Kunth. Universidad del Azuyo. Facultad de Ciencia y Tecnología. Disponible en: http://dspace.uazuay.edu.ec/handle/datos/162

VEGA, C., VELLEGAS, C., ROCABADO, P., QUEZADA, J., LÓPEZ, M. y QUEVEDO, A., 2018. Biología reproductiva de tres especies de Polylepis (P. neglecta, P. incarum y P. pacensis), con énfasis en su comportamiento germinativo. Ecología Austral. [en línea], vol. 28, pp. 310-324. Disponible en doi: https://doi.org/10.25260/EA.18.28.1.1.703

VEGA-KRSTULOVIC, C., BERMEJO-FRANCO, J., VILLEGAS-ALVARADO, G., QUEZADA-PORTUGAL, J., AGUILAR-LLANOS M. y CONDE-VELASCO, E., 2007. Propagación masiva de Polylepis tomentella Weddell ssp . nana mediante técnicas de cultivo in vitro. Ecología en Bolivia [en línea], vol. 39, no. 2, pp. 102-120. Disponible en: http://www.scielo.org.bo/scielo.php?script=sci_abstract&pid=S1605-25282007000800003&lng=pt&nrm=iso&tlng=es

WESCHE, K., CIERJACKS, A., ASSEFA, Y., WAGNER, S., FETENE, M. y HENSEN, I., 2008. Recruitment of trees at tropical alpine treelines: Erica in Africa versus Polylepis in South America. Taylor & Francis [en línea], vol. 0874, no. 1, pp. 35-46. Disponible en doi: https://doi.org/10.1080/17550870802262166

ZUTTA, B., RUNDEL, P., SAATCHI, S., CASANA, J., GAUTHIER, P., SOTO, A., VELAZCO, Y. y BUERMANN, W., 2012. Prediciendo la distribución de Polylepis: bosques Andinos vulnerables y cada vez más importantes. Revista Peruana de Biología [en línea], vol. 19, no. 2, pp. 205-212. Disponible en: http://www.scielo.org.pe/scielo.php?script=sci_arttext&pid=S1727-99332012000200013